В органічних технологіях вирощування картоплі використовують різні біо препарати, які зумовлюють суттєвий вплив як на ріст та розвиток культур, так і на показники родючості ґрунтів, що особливо важливо для дерново-підзолистих грунтів, які характеризуються низькою потенційною родючістю. Метою досліджень було встановлення змін вмісту гумусу та мінерального азоту дерново-середньопідзолистого ґрунту під впливом біопрепаратів для деструкції сидерату гірчиці білої та для обробки бульб і вегетуючих рослин картоплі. У двохфакторному досліді вивчали Фон 1: контроль без деструктора і деструктор Екостерн у дозі 1,2 л/га та Фон 2: дев’ять варіантів застосування біопрепаратів Агат, Регоплант, Міколелп, Фітохелп і Стимпо. Зразки ґрунту відбирали із шару 0-30 см дерновосередньопідзолистого супіщаного ґрунту на водно-льодовикових відкладах. У них визначали вміст загального гумусу за методом Тюріна, вміст мінерального азоту розраховували як суму амонійного та нітратного азоту, визначених потенціометрично. Внесення деструктора по зеленій масі сидерату сприяло підвищенню вмісту гумусу у 0-30 см шарі ґрунту, де він складав 1,135-1,24 % проти 1,025-1,15 % на варіантах без застосування біодеструктора. За вмістом мінерального азоту відмічено зворотну залежність, на варіантах із використанням деструктора Екостерн він був нижчим в середньому на 2,09 мг/кг ґрунту порівняно з варіантами, де не вносили деструктор. Найвищий вміст гумусу був на варіанті 8 (використання Фітохелп для обробки бульб у дозі 1,0 л/т і трьохкратна обробка Фітохелп у дозі 1,0 л/га по вегетації) – 1,15 на варіанті без деструктора і 1,24 % із застосуванням біодеструктора Екостерн, дещо поступався варіант 9 із біопрепаратом Фітохелп. Матеріали, викладені у статті можуть, мати практичну цінність для аграрних підприємств, що займаються вирощуванням органічної картоплі для забезпечення збереження та відтворення органічної речовини ґрунтів
родючість; органічні технології вирощування; гуміфікація; мікроорганізми; деструктор; сидерати
[1] Abbas, M.T., Hamza, M.A., Youssef, H.H., Youssef, G.H., Fayez, M., Monib, M., & Hegazi, N.A. (2014). Bio-preparates support the productivity of potato plants grown under desert farming conditions of north sinai: Five years of field trials. Journal of Advanced Research, 5(1), 41-48. doi: 10.1016/j. jare.2012.11.004.
[2] Bogovin, A.V. (2009). The biogeocenotic role of the relationships of living organisms in the formation and functioning of ecological systems. Ecology and Noospherology. 1-2(20), 102-117.
[3] Demydenko, O., & Velychko, V. (2019). Nitrogen-carbon circulation in agrocenoses with different fertilization systems. Agricultural Science and Practice, 6(1), 28-40. doi: 10.15407/agrisp6.01.028.
[4] DSTU 4287:2004. (2005). Soil quality. Sampling of samples. Kyiv: Derzhspozhivstandard of Ukraine.
[5] DSTU 4289:2004. (2005). Soil quality. Methods for determining organic matter. Kyiv: Derzhspozhivstandard of Ukraine.
[6] DSTU 4362:2004. (2005). Soil quality. Indicators of soil fertility. Kyiv: Derzhspozhivstandard of Ukraine.
[7] DSTU 4725:2007. (2008). Soil quality. Determination of the activity of potassium, ammonium, nitrate and chlorine ions by the potentiometric method. Kyiv: Derzhspozhivstandard of Ukraine.
[8] Dudchenko, V.V., Markovska, O.Ye, & Sidyakina, O.V. (2021). Effectiveness of the action of the biodestructor on the decomposition of post-harvest rice residues in the technology of growing soybeans (Glicine max (L). Cereal Crops, 5(2), 374-382. doi: 10.31867/2523-4544/0198.
[9] Gleń-Karolczyk, K., Bolligłowa, E., & Luty, L. (2022). Health parameters of potato tubers under the influence of soil applied bio-preparations and bio-stimulants. Applied Sciences (Switzerland), 12(22), article number 11593. doi: 10.3390/app122211593.
[10] Humenyuk, O.V. (2013) Nutrient regime of dark gray podzolized soil using a stubble biodestroyer. KHNAU Bulletin, 1, 129-134.
[11] Khomenko, T., Tonkha, O., Pikovska, O., & Achasov, A. (2022). The Influence of Biological Preparations on the Microbiological Activity of Sod-Podzolic Soil for the Cultivation of Food Potatoes. Plant and Soil Science, 13(1). 60-66. doi: 10.31548/agr.13(1).2022.60-66.
[12] Kovalenko, A., Novokhyzhniy, M., Tymoshenko, H., & Serhyeyeva, Yu. (2020). Peculiarities of using stubble destructors in the conditions of the steppe zone. Herald of Agrarian Science, 2(803), 44-51. doi: 10.31073/agrovisnyk202002-07.
[13] Markovska, O., Maliarchuk, M., Maliarchuk, V., Ivaniv, M., & Dudchenko, V. (2020). Modelling of humus balance under different systems of basic tillage and soil fertilization in crop rotations. Ukrainian Journal of Ecology, 10(5), 291-295. doi: 10.15421/2020_246.
[14] Menyailo, O.V., Matvienko, A.I., Makarov, M.I., & Cheng, C-H. (2018) Nitrogen effects on the carbon cycle in forest ecosystems: a review. Lesovedenie, 2, 143-59. doi: 10.7868/S0024114818020067.
[15] Pesticides and agrochemicals. Agrarians together (2020) Retrieved from https://agrarii-razom. com.ua/preparations/agat-25k.
[16] Petrychenko, V., Korniychuk, O., & Voronetska, I. (2018). Biological farming in conditions of transformational changes in the agrarian production of Ukraine. Agricultural Science and Practice, 5(2), 3-12. doi: 10.15407/agrisp5.02.003.
[17] Products catalog. Living Earth. (2022). Retrieved from https://zhyvazemlia.com/ua/td0017067m-kohelp-mycohelp-kompleksniy-b-opreparat-z-r-ststimulyuyuchoyu-ta-antifungalnoyud-yu-fasuvannya-0-5-ua.
[18] Püspök, J.F., Zhao, S., Calma, A.D., Vourlitis, G.L., Allison, S.D., Aronson, E.L., Schimel, J.P., Hanan, E.J., & Homyak, P.M. (2022). Effects of experimental nitrogen deposition on soil organic carbon storage in Southern California drylands. Retrieved from https://onlinelibrary.wiley.com/ doi/epdf/10.1111/gcb.16563.
[19] Regoplant. (2021) Agrobiotech. Mode of access to the resource. Retrieved from https://www. agrobiotech.com.ua/ua/regoplant.
[20] Skrylnyk, Ie.V., Puznyak, O.М., Kutova, А.M., Artemyeva, K.S., & Moskalenko, B.P. (2022). Effect of long-term application of fertilizers on the humus substances transformation in podzolic soil. Agrochemistry and Soil Science. Collected Paper, 93, 4-11. doi: 10.31073/acss93-01.
[21] Solomiychuk, M.P., & Pikovskyi, M.Y. (2021). The influence of Pseudomonas fluorescens bacteria and substances of stimulating nature on the productivity of the soybean plant and the damage of seeds by pathogens. Plant and Soil Science, 12(4), 28-36.
[22] Su, Le-Le, Qin, Y., Wang, Zh., Zhang, Y., & Liu, W. (2023) Soil nutrient and microbial activity responses to nitrogen and phosphorus addition in oats and arrowhead peas in monocrop and mixed sowings [J]. Acta Prataculturae Sinica, 32(3), 56-66. doi: 10.11686/cyxb2022181.
[23] Tonkha, O., Pikovska, O., Balaev, A., Kovalyshyna, G., Zavgorodniy, V., & Kovalenko, V. (2019). Monitoring of the microbiological condition of virgin chernozem under different management. Retrieved from https://www.earthdoc.org/content/papers/10.3997/2214-4609.201903256.
[24] Vaitkevičiene, N., Jariene, E., Ingold, R., & Peschke, J. (2019). Effect of biodynamic preparations on the soil biological and agrochemical properties and coloured potato tubers quality. Open Agriculture, 4(1), 17-23. doi: 10.1515/opag-2019-0002.
[25] Volkogon, V., Berdnikov, O., Dimova, S., & Volkogon, M. (2014). Orientation of nitrogen transformation processes in the soil with corn growing under the different fertilization practices. Agricultural Science and Practice, 1(3), 26-31. doi: 10.15407/agrisp1.03.026.
[26] Volkogon, V., Pyrig, O., Dimova, S., & Volkogon, K. (2020). Focus of mineralization-synthesis processes of the organic matter in the leached chernozem while cultivating potatoes on different fertilization backgrounds. Agricultural Science and Practice, 7(1), 40-48. doi: 10.15407/ agrisp7.01.040.